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Diverse Long RNAs Are Differentially Sorted into Extracellular Vesicles Secreted by Colorectal Cancer Cells

文字:[大][中][小] 2018/11/23     瀏覽次數(shù):    

Diverse Long RNAs Are Differentially Sorted into Extracellular Vesicles Secreted by Colorectal Cancer Cells

結(jié)直腸癌外泌體中差異表達的long RNAs

 

    期刊:Cell Reports;影響因子:8.032

    發(fā)表單位:哈佛醫(yī)學院神經(jīng)病學系

 


導 讀

 

    本研究對外泌體中的long RNAs使用RNAseq技術(shù)檢測表達的RNAs,發(fā)現(xiàn)有大量的mRNAlncRNA存在與外泌體中。

 


摘 要

 

    外泌體編碼和長非編碼RNAlncRNAs; > 200nt)的調(diào)節(jié)和功能作用在很大程度上是未知的。我們以前發(fā)現(xiàn)KRAS突變型結(jié)直腸癌(CRC)細胞釋放外泌體含有不同蛋白質(zhì),microRNA和環(huán)狀RNA。在這里,我們?nèi)孀R別CRC細胞EV中分泌的多種長鏈RNA,并描述他們的特征。

 


材料方法

 

    RNAseq樣品選擇:含有單個WTG13D KRAS等位基因的親本細胞DLD-1,重組產(chǎn)生的子細胞系含有單個WTDKs-8),單個G13DDKO-1)細胞。每種細胞分別測原細胞及其上清液中的外泌體。每個三重復。共計18個樣品。

    RNAseq實驗方法:采用去核糖體RNA建庫的方式,富集mRNA, lncRNA等長非編碼RNA。(也能富集到circRNA,但本文沒有展現(xiàn)數(shù)據(jù)。)

 


結(jié) 果


1   細胞中long RNAEV的比較

    對于所有細胞譜,大約70%的配對reads比對到人類基因組中的單一位置,而在EV中,比對百分比低得多(30-50%)。

 


2   差異RNA輸出和KRAS狀態(tài)

    為了進一步分析細胞和EV之間以及WT和突變體KRAS之間的總體長RNA譜是否不同,我們進行了主成分分析(PCA)。PCA顯示,當比較親本細胞RNA譜和它們分泌的EV RNA時,長RNA譜庫明顯不同(圖2A)。如果單獨比較細胞RNA表達模式,在各種培養(yǎng)條件下,大概KRAS狀態(tài)分離(圖S2)。外泌體的不同分組混在一起,分離度較差。(注意:我們可以看出細胞是相對穩(wěn)定,彼此大約可以分開。但外泌體不能分開。說明外泌體較復雜,或許需要更多的樣品尋找規(guī)律)。


 


3   EVncRNAmRNA的差異富集

    在EV中上調(diào)的絕大多數(shù)長鏈RNA在所有三種同基因系(12,814RNA)中共享,表明這些RNA的輸出機制主要與KRAS無關(guān)。這與我們在先前的miRNA譜中觀察到的相反,其中大多數(shù)RNADKO-1 EV中被上調(diào)。

進行獨特上調(diào)的exRNA的基因本體論(GO)分析以更好地理解EV RNA信號傳導的可能影響。有趣的是,約5,000EV RNA不能唯一地分配到特定的GO類別,這表明大量未注釋的RNA被特異性地輸出到EV中,并且它們的潛在功能尚未被了解。

 


4   mRNA轉(zhuǎn)入EV

    我們檢測到了許多源自EV中的mRNAreads。其中一些在腫瘤發(fā)生中具有已知的作用,包括Rab13,NET1NEDD4。一些mRNA具有全長mRNA reads分布模式,Rab13BMI1的數(shù)據(jù)支持成熟的完整mRNA的存在。相反,來自其他mRNA(例如,Rab3b)的EV讀數(shù)不僅顯示來自外顯子的讀數(shù),而且還顯示內(nèi)含子的豐富讀數(shù),表明未加工的,未剪接的mRNA轉(zhuǎn)錄物或更可能的RNA片段的輸出。

由于RNA-seq不能區(qū)分全長或片段化序列,我們使用qRT-PCRRT-PCR來驗證EVmRNA的水平,并測試EV中是否存在全長轉(zhuǎn)錄。雖然技術(shù)困難可能會抑制長RNA的逆轉(zhuǎn)錄,但我們無法擴增大多數(shù)1 kb的大多數(shù)mRNA,這表明大多數(shù)較長的mRNA可能不會作為EV中的完整mRNA存在,與以前的工作一致。有趣的是,我們無法通過RT-PCR檢測全長BMI1轉(zhuǎn)錄物,而我們能夠檢測全長Rab13b-肌動蛋白mRNA。與細胞譜相比,任何EV制劑中肌動蛋白或mRNA水平都不富集。

 


5   lncRNAEV

    對于EV差異lncRNA的富集,我們發(fā)現(xiàn)許多富含EVlncRNA與其匹配的同源細胞(包括反義RNA)和衍生自假基因的轉(zhuǎn)錄物相比較。大多數(shù)高度上調(diào)的lncRNA要么未經(jīng)注釋,要么之前未進行過研究,這表明這些RNA通過導入EV可能發(fā)揮作用。

 


6   mRNA的細胞外轉(zhuǎn)移

    我們再次使用transwell測定支持Rab13-HA mRNA的細胞外轉(zhuǎn)移。Rab13-HA蛋白在受體細胞中也是可檢測的,但同樣,只有當DKO-1細胞作為供體細胞時。在這種情況下,標記的蛋白質(zhì)可能已經(jīng)轉(zhuǎn)移到EVRab13-HA mRNA可能已被轉(zhuǎn)移并隨后在受體細胞中翻譯。

 


7   lncRNA的細胞外轉(zhuǎn)移

    為了測試lncRNA的轉(zhuǎn)移,我們開發(fā)了CRISPR-Display系統(tǒng),與通過EV轉(zhuǎn)移一致,我們能夠檢測EV顆粒中的全長修飾的gRNA。表明外泌體可以轉(zhuǎn)移lncRNA

 


討 論

    我們的數(shù)據(jù)支持這樣的假設(shè):長鏈RNA輸出到EV中是一個選擇性過程,來自EVRNA表達譜不僅僅反映細胞RNA豐度。由于最初的研究表明mRNA和蛋白質(zhì)的水平轉(zhuǎn)移,幾乎所有已知類型的RNA都在細胞外液中被檢測到。然而,證明功能性長編碼和非編碼RNA轉(zhuǎn)移的確定性研究是有限的。我們顯示長的編碼和非編碼RNA可以在供體和受體細胞之間轉(zhuǎn)移,并且KRAS狀態(tài)在調(diào)節(jié)這種轉(zhuǎn)移中起作用。

 

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